摘 要：目的：研究蒙药额力根-7对肝纤维化的改善作用及机制。方法：以大鼠肝星状细胞HSC-T6为研究对象，将细胞分为模型组（空白血清）和额力根-7含药血清低、中、高剂量组（10%、15%、20%额力根-7含药血清）。各组细胞均先加入转化生长因子β溶液（0.2 mg/mL）培养48 h以复制肝纤维化模型，然后再加入相应空白或含药血清。检测各组细胞的光密度（OD）值并计算增殖抑制率（加血清后培养24、48、72 h时）；检测各组细胞的凋亡率、周期分布和细胞中Ⅰ型胶原蛋白（CollagenⅠ）、α-平滑肌肌动蛋白（α-SMA）以及磷脂酰肌醇-3激酶/蛋白激酶B(PI3K/Akt)信号通路相关因子[PI3K、Akt、磷酸酯酶与张力蛋白同源物（PTEN）]的mRNA和蛋白表达水平（加血清后培养24 h时）。进一步以Wistar大鼠为研究对象，将大鼠分为空白组、模型组和额力根-7低、中、高剂量组（135、270、405 mg/kg），每组10只。空白组和模型组大鼠灌胃0.5%羧甲基纤维素钠溶液，其余各组大鼠均灌胃相应药物，每天1次，连续10周。末次灌胃后，观察大鼠肝组织病理形态学变化，检测肝组织中CollagenⅠ、α-SMA、PI3K、Akt、PTEN的mRNA和蛋白表达水平。结果：与模型组比较，各剂量给药组细胞的OD值（培养72 h时的中、高剂量组除外）、S期细胞比例均显著降低（P<0.01），晚期凋亡率、早期凋亡率（低剂量除外）、总凋亡率和G2/M期细胞比例均显著升高（P<0.01）；细胞和大鼠肝组织中CollagenⅠ、α-SMA、PI3K、Akt的mRNA和蛋白表达水平均显著降低（P<0.05或P<0.01）,PTEN的mRNA和蛋白表达水平均显著升高（P<0.05或P<0.01）。结论：额力根-7具有抗肝纤维化作用，其作用机制可能与调控PI3K/Akt信号通路活性、促进肝星状细胞凋亡有关。
关键词：肝纤维化 额力根-7 PI3K/Akt信号通路 细胞凋亡 肝星状细胞 大鼠
Study on Improvement Effects of Mongolian Medicine Eligen-7 on Hepatic Fibrosis and Its Mechanism
YAN Yuxin ZHANG Chunyan GAO Xiaoyang MA Yuehong
School of Basic Medicine,Inner Mongolian Medical University;
Abstract：OBJECTIVE:To study the improvement effects of Mongolian medicine eligen-7 on hepatic fibrosis(HF)and its mechanism. METHODS:Taking rat hepatic stellate cells HSC-T6 as research object,the cells were divided into model group(blank serum)and low-dose,medium-dose and high-dose groups of eligen-7 containing serum(10%,15% and 20% eligen-7 containing serum). Transforming growth factor β solution(0.2 mg/mL)was added into the cells for 48 h to induce liver fibrosis model,and then added into the corresponding blank or drug-contained serum. The optical density(OD)of cells in each group was measured and inhibition rate of cell proliferation was calculated(after treated for 24,48 and 72 h). The apoptotic rate and cycle distribution of cells were detected;m RNA and protein expression of type Ⅰ collagen(Collagen Ⅰ),α-smooth muscle actin（α-SMA）,phosphatidylinositol-3-kinase and protein-serine-threonine kinase(PI3K/Akt)signaling pathway related factors(PI3K,Akt,PTEN) were also detected(after treated for 24 h). Wistar rats were further divided into blank group,model group and low-dose,medium-dose and high-dose groups of eligen-7(135,270,405 mg/kg),with 10 rats in each group. Blank group and model group were given 0.5% sodium carboxymethyl cellulose solution intragastrically;other groups were given relevant medicine intragastrically,once a day,for consecutive 10 weeks. After last intragastric administration,the pathomorphological changes of liver tissue were observed;mRNA and protein expression of Collagen Ⅰ,α-SMA,PI3K,Akt and PTEN were detected in liver tissue. RESULTS:Compared with model group,OD value(except for medium-dose and high-dose groups of eligen-7 containing serum)and the proportion of cells at S phase in administration groups were decreased significantly(P<0.01);late apoptotic rate,early apoptotic rate(except for low-dose group), total apoptotic rate and the proportion of cells at G2/M phase increased significantly(P<0.01);mRNA and protein expression of Collagen Ⅰ,α-SMA,PI3K and Akt in cells and liver tissue were decreased significantly(P<0.05 or P<0.01),those of PTEN were increased significantly(P<0.05 or P<0.01). CONCLUSIONS:Eligen-7 shows the effect of anti-hepatic fibrosis, the mechanism of which may be related to regulating the activity of PI3K/Akt signaling pathway and promoting the apoptosis of hepatic stellate cells.
Keyword：Hepatic fibrosis; Eligen-7; PI3K/Akt signaling pathway; Cell apoptosis; Hepatic stellate cells; Rat;
肝纤维化是慢性肝损伤进展为肝硬化的必经阶段，主要表现为细胞外基质（ECM）的异常沉积，对肝脏功能具有重要影响[1]。相关研究发现，药物可通过作用于转化生长因子β（TGF-β）/Smad、磷脂酰肌醇-3激酶（PI3K）/蛋白激酶B(Akt）等信号通路来降低肝组织中ECM的异常沉积，从而发挥治疗肝纤维化的目的[2]。肝星状细胞（HSC）是肝脏中关键的纤维化效应细胞，当其活化后，可在肝脏内产生过多的ECM，从而导致肝纤维化[3-4]。
蒙药传统方剂额力根-7由蓝盆花、红花、人工牛黄、石膏、香青兰、瞿麦、五灵脂等7味药材组成，具有清肝热的作用，临床可用于治疗黄疸、肝区疼痛、肝纤维化等[5]。但额力根-7仅有临床应用经验，并无具体药理机制研究，从而使其推广受限。
α-平滑肌肌动蛋白（α-SMA）在HSC处于不活化的静止状态时不表达或低表达[6]；Ⅰ型胶原蛋白（CollagenⅠ）是ECM的主要组成部分之一，在HSC活化时其表达逐渐增强[7]。因此，通过测定二者含量能够反映出肝纤维化的病理情况。相关研究发现，PI3K/Akt信号通路的激活可促使HSC活化，从而影响ECM的产生和降解，并和众多致纤维化因子发生关联[8]。磷酸酯酶与张力蛋白同源物（PTEN）是PI3K活化的主要负调控因子，能抑制PI3K通路下游蛋白的激活，如Akt和蛋白激酶C(PKC)[9]。但额力根-7是否能通过PI3K/Akt信号通路发挥治疗肝纤维化的作用，尚不明确。
基于此，本研究拟采用大鼠HSC-T6细胞为对象[10]，从细胞实验层面研究额力根-7的抗肝纤维化作用；再结合动物实验，进一步探讨额力根-7抗肝纤维化的作用及机制，以期为该方剂抗肝纤维化的机制阐明提供实验依据。
1 材料
1.1 主要仪器
本研究所用主要仪器有JP-1000B-8W型药物粉碎机（永康市久品工贸有限公司），CT15RE型高速离心机（日本Hitachi公司），DYY-6C型电泳槽、DYY-6C型电泳仪（北京六一生物科技有限公司），7500 Fast型荧光定量聚合酶链式反应（PCR）仪（美国Thermo Fisher Scientific公司），SM2010R型切片机（德国Leica公司）。
1.2 主要药品与试剂
本研究所用蓝盆花（批号171219）、红花（批号171103）、瞿麦（批号170910）、香青兰（批号171109）、五灵脂（批号171215）、人工牛黄（批号171030）、石膏（批号171217）等药材均购自内蒙古天盛蒙中医有限责任公司，由内蒙古医科大学蒙医药学院蒙药炮制实验中心呼日乐巴根副教授鉴定为真品。重组人TGF-β（美国Peprotech公司，批号0918AF35451419）；胰酶（美国Proemga公司，批号121652);Fast King c DNA第一链合成试剂盒、Super Real荧光定量预混试剂（北京天根生化科技有限公司，批号分别为U8305、S8129）；兔抗大鼠α-SMA多克隆抗体、兔抗大鼠GAPDH多克隆抗体、兔抗大鼠CollagenⅠ多克隆抗体（武汉三鹰生物技术有限公司，批号分别为00075696、00075847、00066288）；兔抗大鼠PI3K多克隆抗体、兔抗大鼠Akt多克隆抗体、兔抗大鼠PTEN多克隆抗体（北京博奥森生物技术有限公司，批号分别为bs-10657R、bs-6951R、bs-0748R);Dylight800标记的山羊抗兔免疫球蛋白G(Ig G）二抗（美国Abbkine公司，批号ATSMR2201);AnnexinⅤ-FITC细胞凋亡试剂盒、细胞周期与细胞凋亡检测试剂盒（上海碧云天生物技术有限公司，批号分别为092120201021、081820200917);MTT试剂盒（北京索莱宝科技有限公司，批号20210727);PCR引物由生工生物工程（上海）股份有限公司设计合成（PCR引物序列及产物长度见表1）；其余试剂为实验室常用规格，水为超纯水。
表1 PCR引物序列及产物长度
1.3 动物
本研究所用动物为清洁级Wistar大鼠，雄性，鼠龄8周，体质量为190～220 g，购自北京维通利华实验动物技术有限公司，动物生产许可证号为SCXK（京）2016-0006，动物使用许可证为SYXK（蒙）2015-0001。大鼠均饲养于内蒙古医科大学实验动物中心清洁区，室温为18～22℃。
1.4 细胞
大鼠HSC-T6细胞购自北京北纳科技有限公司。
2 方法
2.1 细胞实验研究
2.1.1 额力根-7含药血清的制备
除人工牛黄外，将额力根-7处方中其余药材均粉碎，过100目筛，然后取红花180 g、香青兰60 g、蓝盆花60 g、瞿麦60 g、石膏180 g、五灵脂60 g（均为药材粉末）和人工牛黄80 g混合均匀后得到额力根-7（临用时以0.5%羧甲基纤维素钠溶液溶解）。将大鼠随机分为对照组和给药组（1.35 g/kg额力根-7，剂量为临床等效剂量的10倍），每组8只。对照组大鼠灌胃等量羧甲基纤维素钠溶液，给药组大鼠灌胃相应药物，每天1次，连续8 d。第8天时，给药组大鼠于腹主动脉取血适量，血样静置20 min后，以3 000 r/min离心15 min；取上清液，以0.22μm微孔滤膜过滤，即得含药血清[6-7]。对照组同法操作，制备空白血清。
2.1.2 细胞分组、造模与给药
将HSC-T6细胞复苏种板后置于37℃、5%CO2的条件下（以下培养条件相同）培养12 h，然后调整细胞密度为6×107m L-1，分为模型组和额力根-7含药血清低、中、高剂量组，每组设3个复孔。各组细胞先加入0.2 mg/m L TGF-β溶液10μL，培养48 h以复制肝纤维化模型[10]；然后弃培养基，模型组加入10%空白血清，额力根-7含药血清各剂量组分别加入10%、15%、20%含药血清（剂量根据课题组前期预实验结果设置）。
2.1.3 细胞增殖抑制率的检测
采用MTT法进行检测。取HSC-T6细胞，调整细胞密度为6×107m L-1，按“2.1.2”项下方法分组、造模与给药（同时设不加细胞的空白对照组），分别培养24、48、72 h后，按MTT试剂盒说明书方法测定各孔吸光度（OD）值，并计算HSC-T6细胞的增殖抑制率[增殖抑制率=（模型组平均OD值-实验组平均OD值）/（模型组平均OD值-空白对照组平均OD值）×100%]。
2.1.4 细胞凋亡率的检测
采用流式细胞仪进行检测。取HSC-T6细胞，调整细胞密度为6×107m L-1，按“2.1.2”项下方法分组、造模与给药，培养24 h。收集细胞，按AnnexinⅤ-FITC细胞凋亡试剂盒说明书方法操作后，采用流式细胞仪检测各组细胞的凋亡情况。
2.1.5 细胞周期的检测
采用流式细胞仪进行检测。取HSC-T6细胞，调整细胞密度为6×107m L-1，按“2.1.2”项下方法分组、造模与给药，培养24 h。收集细胞，按细胞周期与细胞凋亡检测试剂盒说明书方法操作后，采用流式细胞仪检测各组细胞的周期分布。
2.1.6 细胞中CollagenⅠ、α-SMA和PI3K/Akt信号通路相关因子m RNA表达水平的检测
采用q-PCR法进行检测。取HSC-T6细胞，调整细胞密度为6×107m L-1，按“2.1.2”项下方法分组、造模与给药，培养24 h。收集细胞，采用TRIzol法提取总RNA，然后根据试剂盒说明书相关方法，将总RNA逆转录为c DNA。以c DNA为模板，进行PCR扩增。反应体系为：c DNA模板2μL,2×Super Real Pre Mix Plus 10μL,50×ROX Reference Dye0.4μL，上、下游引物各0.6μL,RNase-free dd H2O 6.4μL。反应条件为：95℃预变性15 min;95℃变性10 s,60℃退火30 s，共40个循环。以β-actin为内参，采用2-ΔΔCt法计算CollagenⅠ、α-SMA、PI3K、Akt、PTEN m RNA的表达水平。
2.1.7 细胞中CollagenⅠ、α-SMA蛋白和PI3K/Akt信号通路相关蛋白表达水平的检测
采用Western blot法进行检测。取HSC-T6细胞，调整细胞密度为6×107m L-1，按“2.1.2”项下方法分组、造模与给药，培养24 h。收集细胞，以磷酸盐缓冲液（PBS）洗涤2～3次，加入适量RI-PA裂解液提取总蛋白，并置于冰上充分裂解20 min后于4℃条件下以13 000 r/min离心15 min；取上清液，采用BCA法测定蛋白浓度。蛋白经煮沸变性后，进行十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）；转膜，以5%脱脂奶粉封闭1 h；加入GAPDH（稀释度为1∶20 000）、α-SMA（稀释度为1∶2 500）、CollagenⅠ（稀释度为1∶1 000）、PI3K（稀释度为1∶1 000）、Akt（稀释度为1∶1 000）、PTEN（稀释度为1∶1 000）一抗，于4℃孵育过夜；以TBST清洗10 min×3次，加入荧光标记二抗（稀释度为1∶10 000）常温孵育1 h；以TBST清洗10 min×3次，采用近红外激光成像系统成像。采用Image Studio软件进行分析，以目的蛋白与内参GAPDH的灰度值比值表示目的蛋白的表达水平。
2.2 动物实验研究
2.2.1 造模、分组与给药
将Wistar大鼠随机分为空白组、模型组和额力根-7低、中、高剂量组（135、270、405mg/kg，剂量分别为临床等效剂量的1、2、3倍），每组10只。除空白组外，其余4组大鼠参考文献[11-12]灌胃CCl4(2 m L/kg）以复制肝纤维化模型，每周2次，连续10周。造模的同时，空白组和模型组大鼠灌胃0.5%羧甲基纤维素钠溶液，其余各组大鼠均灌胃相应药物，每天1次，连续10周。
2.2.2 大鼠肝组织病理形态学的观察
末次灌胃结束后，处死各组大鼠，取其肝组织，一部分置于4%甲醛溶液中固定，一部分于-80℃下保存，备用。将固定48 h的肝组织进行乙醇梯度脱水，再以二甲苯透明替换、浸蜡、包埋、切片（厚度约5μm）后，分别进行苏木精-伊红（HE）染色和Masson染色，然后于光学显微镜下观察肝组织病理形态变化。
2.2.3 大鼠肝组织中CollagenⅠ、α-SMA和PI3K/Akt信号通路相关因子m RNA表达水平的检测
取“2.2.2”项下冻存的各组大鼠肝组织，同“2.1.6”项下“采用TRIzol法提取总RNA……PTEN m RNA的表达水平”操作，检测肝组织中CollagenⅠ、α-SMA和PI3K/Akt信号通路相关因子m RNA的表达水平。
2.2.4 大鼠肝组织中CollagenⅠ、α-SMA蛋白和PI3K/Akt信号通路相关蛋白表达水平的检测
取“2.2.2”项下冻存的各组大鼠肝组织，同“2.1.7”项下“以PBS洗涤2～3次……表示目的蛋白的表达水平”操作，检测肝组织中CollagenⅠ、α-SMA蛋白和PI3K/Akt信号通路相关蛋白的表达水平。
2.3 统计学方法
采用SPSS 22.0软件对数据进行统计分析。数据以表示，多组间比较采用单因素方差分析，组间两两比较采用LSD检验。检验水准α=0.05。
3 结果
3.1 细胞实验结果
3.1.1 额力根-7含药血清对HSC-T6细胞增殖的影响
与模型组比较，给药培养24 h后，额力根-7含药血清各剂量组细胞的OD值均显著降低（P<0.01），增殖抑制率分别为49.42%、33.96%和59.56%；培养48 h后，额力根-7含药血清各剂量组细胞的OD值均显著降低（P<0.01），增殖抑制率分别为26.29%、22.45%、35.21%；培养72 h后，额力根-7含药血清低剂量组细胞的OD值显著降低（P<0.05），增殖抑制率为18.12%。结果见表2。
表2 各组细胞的OD值和增殖抑制率的检测结果（n=3)
3.1.2 额力根-7含药血清对HSC-T6细胞凋亡的影响
与模型组比较，额力根-7含药血清各剂量组细胞的晚期凋亡率、早期凋亡率（低剂量组除外）以及总凋亡率均显著升高（P<0.01）。结果见表3、图1。
表3 各组细胞凋亡率的检测结果
3.1.3 额力根-7含药血清对HSC-T6细胞周期的影响
与模型组比较，额力根-7含药血清各剂量组的S期细胞比例均显著降低（P<0.01),G2/M期细胞比例均显著升高（P<0.01）。结果见表4、图2。
3.1.4 额力根-7含药血清对HSC-T6细胞中CollagenⅠ、α-SMA和PI3K/Akt信号通路相关mRNA表达的影响
与模型组比较，额力根-7含药血清各剂量组细胞中CollagenⅠ、α-SMA、PI3K、Akt的m RNA表达水平均显著降低（P<0.05或P<0.01),PTEN m RNA表达水平均显著升高（P<0.01）。结果见表5。
3.1.5 额力根-7含药血清对HSC-T6细胞中CollagenⅠ、α-SMA蛋白和PI3K/Akt信号通路相关蛋白表达的影响
与模型组比较，额力根-7含药血清各剂量组细胞中CollagenⅠ、α-SMA、PI3K、Akt蛋白的表达水平均显著降低（P<0.05或P<0.01),PTEN蛋白的表达水平均显著升高（P<0.01）。结果见表6、图3。
图1 各组细胞凋亡的流式散点图
表4 各组细胞周期分布比例的检测结果
3.2 动物实验结果
3.2.1 额力根-7对大鼠肝组织病理形态学的影响
HE染色和Masson染色结果均显示，空白组大鼠肝小叶完整，肝细胞排列整齐且未见纤维组织增生；模型组大鼠肝细胞排列不规则，肝索紊乱，可见大量胶原纤维同时伴有假小叶形成；额力根-7各剂量组大鼠纤维化程度均较模型组减轻，肝索排列趋于正常，肝小叶清晰。结果见图4。
3.2.2 额力根-7对大鼠肝组织中CollagenⅠ、α-SMA和PI3K/Akt信号通路相关因子m RNA表达的影响
与空白组比较，模型组大鼠肝组织中CollagenⅠ、α-SMA、PI3K、Akt的m RNA表达水平均显著升高（P<0.01),PTEN m RNA表达水平均显著降低（P<0.01）。与模型组比较，额力根-7各剂量组大鼠肝组织中上述指标水平均显著逆转（P<0.01）。结果见表7。
图2 各组细胞周期分布的流式直方图
表5 各组细胞中CollagenⅠ、α-SMA和PI3K/Akt信号通路相关因子m RNA表达水平的检测结果
3.2.3 额力根-7对大鼠肝组织中CollagenⅠ、α-SMA蛋白和PI3K/Akt信号通路相关蛋白表达的影响
与空白组比较，模型组大鼠肝组织中CollagenⅠ、α-SMA、PI3K、Akt蛋白的表达水平均显著升高（P<0.01),PTEN蛋白表达水平均显著降低（P<0.01）。与模型组比较，额力根-7各剂量组大鼠肝组织中上述指标水平均显著逆转（P<0.05或P<0.01）。结果见表8、图5。
4 讨论
肝纤维化是由一种或多种物理、化学或微生物因子引起的常见慢性疾病，其特征是成纤维细胞的异常积累和ECM的过度沉积，并伴有明显的炎性病变和结构改变[13-14]。HSC是在肝损伤过程中促进纤维化发生的细胞，主要位于肝窦空间和Disse空间，可分泌ECM并产生胶原酶，从而参与肝脏中胶原蛋白的合成[15-16]。静止状态下的HSC对肝脏的正常代谢功能至关重要；但当肝脏出现损伤时，静止的HSC会向其活化表型转分化，从而加快肝损伤后的纤维化进程[17]。
表6 各组细胞中CollagenⅠ、α-SMA蛋白和PI3K/Akt信号通路相关蛋白表达水平的检测结果
图3 各组细胞中CollagenⅠ、α-SMA蛋白和PI3K/Akt信号通路相关蛋白表达的电泳图
PI3K/Akt信号通路是肝纤维化形成过程中的重要信号通路，其可调控HSC的活化来干预肝纤维化的进程[13]。PI3K/Akt信号通路的激活是一个多步骤的过程，包括两种方式：一种是与具有磷酸化酪氨酸残基的生长因子受体或连接蛋白相互作用，引起二聚体构象改变而被激活；另一种是通过Ras蛋白和p110蛋白直接结合从而被激活[13]。PI3K/Akt信号源于膜受体酪氨酸激酶（RTK）的激活，当细胞外的配体与膜受体RTK结合后，RTK被激活而发生同源或异源寡聚化或者自身磷酸化，从而为p85蛋白亚单位的SH2结构域提供锚定位点，进而激活p85蛋白[18-19]。相关研究发现，解除p85蛋白对p110蛋白亚单位的抑制作用，可活化p110蛋白，进而催化膜表面的磷脂酰肌醇-4,5-二磷酸（PIP2），生成磷脂酰肌醇-3,4,5-三磷酸（PIP3)[20]；然后，PIP3作为第二信使与Akt的普列克底物蛋白同源结构域结合，使Akt从细胞质转移至细胞膜，从而定位于磷酸肌醇依赖性激酶1(PDK1）和磷酸肌醇依赖性激酶2(PDK2）附近[21]。当Akt的构象发生变化时，将暴露其磷酸化位点，使PDK1磷酸化Akt的Thr308结构域，PDK2磷酸化Akt的Ser473结构域[22]；然后磷酸化的Akt脱离细胞膜进入细胞质和细胞核，从而引起信号通路的级联反应，进而调节细胞的增殖、分化以及凋亡[23]。PI3K/Akt信号通路的激活能够促使HSC活化和凋亡来干预肝纤维化的进程，影响ECM的产生和降解，并和众多致纤维化因子发生关联，从而起到促进肝纤维化发生发展的作用。PTEN是细胞生长和存活信号传导途径的负调节物[24]，可通过去磷酸化作用将PIP3转换成PIP2，从而导致PIP3和依赖于PIP3的信号均减少[25]。因此，PTEN能够通过降低细胞内的PIP3水平，抑制PI3K信号通路下游蛋白Akt的激活，从而抑制PI3K/Akt信号通路的活化，进而阻止肝纤维化的持续发生发展。
图4 各组大鼠肝组织的病理形态学显微图（×100)
表7 各组大鼠肝组织中CollagenⅠ、α-SMA和PI3K/Akt信号通路相关m RNA表达水平的检测结果
表8 各组大鼠肝组织中CollagenⅠ、α-SMA蛋白和PI3K/Akt信号通路相关蛋白表达水平的检测结果
图5 各组大鼠肝组织中CollagenⅠ、α-SMA蛋白和PI3K/Akt信号通路相关蛋白表达的电泳图
本研究结果发现，经不同剂量额力根-7含药血清干预后，HSC-T6细胞的晚期凋亡率、早期凋亡率（低剂量组除外）、总凋亡率以及G2/M期的细胞比例均显著升高，OD值（培养72 h时的中、高剂量组除外）和S期细胞比例均显著降低，表明额力根-7含药血清能通过阻滞细胞于G2/M期，来抑制细胞的增殖。q-PCR和Western blot实验显示，经额力根-7含药血清干预后，HSC-T6细胞中CollagenⅠ、α-SMA、PI3K、Akt的m RNA和蛋白表达水平均显著降低，PTEN m RNA和蛋白表达水平均显著升高。为了证明额力根-7对肝纤维化有明确的改善作用，笔者又基于动物实验，研究不同剂量额力根-7的抗肝纤维化作用。结果显示，经额力根-7干预后，大鼠肝纤维化程度减轻，肝索排列趋于正常，肝小叶清晰；大鼠肝组织中CollagenⅠ、α-SMA、PI3K、Akt的m RNA和蛋白表达水平变化情况与细胞实验一致。这表明额力根-7抗肝纤维化的作用机制可能与调控PI3K/Akt信号通路活性有关。
综上所述，额力根-7具有抗肝纤维化的作用，其作用机制可能与调控PI3K/Akt信号通路活性、促进HSC凋亡有关。
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