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思密达延迟给药对百草枯中毒大鼠血浆百草枯浓度的影响

  • 投稿张师
  • 更新时间2015-09-16
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姜银松1 王占青2 马玉英1

1.石河子大学医学院,新疆石河子 832002;2.滨州医学院烟台附属医院,山东烟台 264100

[摘要] 目的 观察延迟思密达(Smecta)给药对百草枯(Paraquat,PQ)中毒大鼠血浆百草枯浓度、影响,分析其作用机理。方法 SPF级SD大鼠76只随机分为生理盐水对照组(A组)6只、30 min百草枯灌胃染毒对照组(B组,30只)、30 min思密达灌胃干预组(C组,30只)。B组、C组中毒后2、6、24、48、72 h分批处死存活的大鼠,每次6只,测定血浆PQ浓度。结果 各组大鼠无自然死亡,染毒大鼠血浆百草枯浓度随时间延长而迅速下降,B组PQ血浆浓度(ng/ml)范围(4 269.237 6±356.757 7,456.556 0±78.062 5);C组与B组在同一时间点相比,中毒后2、6 h血浆浓度明显降低(P<0.05),其他时间点差异无统计学意义。结论 中毒后30 min思密达灌胃能在一定程度上降低大鼠血浆百草枯浓度。

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关键词 思密达;百草枯;血浆浓度;病理变化;治疗作用

[中图分类号] R459.7 [文献标识码]A [文章编号]1674-0742(2014)03(c)-0039-02

[作者简介] 姜银松(1987-),女,新疆石河子人,硕士研究生,研究方向:重症医学,E-mail:jys1220@126.com。

[通讯作者] 王占青,男,E-mail:961397068@qq.com。

PQ对人毒性极强且中毒事件频发,在亚洲国家尤为严重。研究报道,人口服PQ致死量为1~3 g(20%PQ溶液5~15 ml或者30 mg/kg[1]。虽然国内外学者一直致力于PQ的基础和临床研究[2],但仍未探索到效的治疗方法,死亡率居高不下。临床研究证实血浆百草枯浓度是决定患者预后最重要的因素之一,及时清除、阻断口服百草枯由胃进入小肠,防止百草枯经血液循环到达重要脏器,是目前提高患者生存率的关键。思密达具有显著的胃肠道保护作用,在临床得到广泛的应用[3],报道显示其对酒精、有机农药中毒有着独特的疗效,但目前仍少见思密达对百草枯中毒患者血浆浓度影响的研究。我们课题组前期研究发现在百草枯中毒后10 min给予大鼠思密达灌胃,干预组大鼠的血浆浓度比染毒对照组明显改善,基于此,我们继续在大鼠百草枯中毒后30 min延迟给予思密达灌胃进行干预,进一步观察思密达对百草枯中毒大鼠血浆浓度的影响,为治疗百草枯中毒探索有效途径。

1 材料与方法

1.1 动物、试剂及仪器

SPF级成年SD大鼠76只,购自新疆乌鲁木齐市疾病防治和控制中心动物科,批号 SCXK(新)2003-0002,重量200-250 g;20%百草枯水剂(江苏南通先正达农药公司) ;PQ标准品(HPLC)99.9area%,100mg,美国SIGMA-ALDRICH );乙腈(色谱纯)、甲醇(色谱纯)、三乙胺(分析纯)、磷酸(分析纯)均购自天津光复试剂有限公司;庚烷磺酸钠,分析纯,purity≥98%,20g (加拿大BBI),编号S2068,上海生工生物工程公司提供;思密达(博福-益普生天津制药有限公司生产);HC-C18色谱柱(250×4.6×5 mm,美国,Agilent);日本岛津高效液相色谱仪(编号07007324;LC-20AT泵;CBM-20A控制器;SPD-M20A检测器;SIL-20A自动进样器;CTO-10AS VP 柱温箱;CLASS-LC10工作站)

1.2 方法

1.2.1 动物分组、标本采集 实验参照文献[4]进行。大鼠按随机数字表法分为生理盐水对照组(A组)6只、30 min染毒组对照组(B组)30只、30 min思密达干预组(C组)30只。B、C组给予PQ(50 mg/kg)稀释至l ml灌胃染毒,A组同时给予l ml生理盐水灌胃。C组染毒后30 min给予思密达400 mg/kg(浓度60 mg/ml)灌胃,A组和B组同时等量生理盐水灌胃。B组、C组分别于中毒后2、6、24、48、72 h处理存活的大鼠,每次6只。氯胺酮注射液150 mg/kg 腹腔注射麻醉,下腔静脉取血3 ml,5 000 rpm离心5 min取血浆,-70 ℃冻存待测[5-6],A组于实验结束后按同样方法一并处理。

1.2.2 血浆百革枯含量检测 精确称取百草枯标准品10 mg于l0 ml容量瓶中,加水稀释至刻度,得浓度为1.0 mg/ml浓标液。浓标液储存于4 ℃冰箱中,工作液在使用前由浓标液逐级稀释制得。仪器分析条件:Agilent (HC-C18,250×4.6×5 mm)色谱柱;流动相: 乙腈:75 mmol/L庚烷磺酸钠(12:88,V/V,用三乙胺调PH=3.0);流速为1.0 ml/min;柱温为室温;检测波长为258 nm。吸取血浆上清液0.5 ml置于试管中,加入体积分数为35%的高氯酸100 ml,蜗旋1 min。高速离心12 000 rpm5 min,取上清液20 ml迸样进行HPLC分析,记录实验数据。精确配制百草枯浓度为20、50、100、500、1 000、5 000 ng/ml范围内的6个空白对照血浆样品,在本色谱条件下.按样品处理方法处理后,测其峰面积,由百草枯峰面积(y)对百草枯浓度(x)进行线性回归。计算百草枯样品的回归方程,依据百草桔回归方程可得血浆百草枯浓度(ng/ml)。

1.3 统计方法

采用SPSS17.0进行统计学处理。计量资料用均数±标准差(x-±s)表示。数据通过正态分布和方差齐性检验,浓度比较采用两样本t检验;病理评分采用完全随机设计单因素方差分析,并采用LSD检验进行两组之间比较。

2 结果

2.1 百草枯线性关系及血浆百草桔含量

血浆PQ回归方程:Y=98.821 0x+5 707.540 7。PQ在20~ 5 000 ng/ml范围内线性关系良好,PQ最低检测限为20 ng/mL。B组血浆PQ浓度随时间延长而逐渐下降,中毒后2 h浓度最高,6 h仍保持较高水平,24 h后开始明显下降,72 h浓度最低。C组在同一时间点与B组相比,中毒后2、6 h组大鼠血浆百草枯浓度比B组显著降低,差异有统计学意义(P<0.05),其他时间点差异无统计学意义(P<0.05),见表1。

3 讨论

国内外学者积极使用血液净化、白陶土等方法降低血浆PQ浓度、逆转百草枯所致的肺纤维化 [7-9],虽取得了一定成效,但临床病死率仍无明显改善。寻找更加高效结合胃肠道PQ的吸附剂,降低PQ吸收的剂量,成为治疗PQ中毒一个基本而又重要的探索方向。根据PQ遇土钝化的理化特性以及思密达高效的吸附能力,该实验使用思密达在大鼠PQ中毒后30 min给予灌胃,观察思密达对PQ中毒大鼠血浆浓度的保护作用。

人口服PQ中毒后0.5~4 h内血浆PQ浓度达到峰值,之后进入血浆浓度迅速下降期、百草枯广泛分布到全身各处,其中胃、肠道、肺等脏器中浓度最高,蓄积时间最长。PQ在大鼠体内的代谢过程和人的不尽相同[10]。赵波将50 mg/kgPQ原液(20%)加蒸馏水稀释至1 ml给予大鼠灌胃染毒,于染毒后8、24、48 h等时间点使用高效液相法检测血浆PQ浓度,结果发现中毒后8 h血浆浓度最高,72 h已经检测不到百草枯[4]。该实验结果显示染毒组大鼠血浆PQ浓度随着时间的延长发生动态改变。该实验中大鼠血浆浓度的代谢动力学基本和以上研究一致,但是关于大鼠血浆中PQ浓度最终消失的时间存在分歧,这可能和实验中大鼠差异、浓度检测条件不同等有。中毒后30 min给予思密达处理的大鼠与30 min PQ染毒对照组相比,血浆百草枯浓度在中毒后2、6 h有所降低(P<0.05),其他时间点浓度有所降低,差异无统计学意义,这说明中毒后30 min给予染毒大鼠思密达处理,思密达对百草枯有一定吸附作用,但降低血浆百草枯浓度的作用有限。分析思密达降低血浆百草枯浓度以及其作用受限的机理如下:①思密达主要成分为八面体蒙脱石微粒,表面积大。思密达与PQ在胃内充分接触、混合,高效地吸附了胃肠道内毒物,而且结合物不进入血液循环,直接经消化道排出体外,保证了思密达吸附毒物的有效性,降低血浆PQ浓度。体外研究[11]显示思密达比白陶土和活性炭有更强的吸附能力,对救治百草枯中毒更有力治疗百草枯中毒。②思密达能够减少农药中毒所致机体胃肠功能不全的发生率,恢复胃肠蠕动,缩短毒物在消化道的停留时间[3],避免再吸收。③口服PQ为水溶性制剂,在中毒后30 min后大鼠胃中的PQ已经大量进入肠道被吸收,此时给予思密达灌胃,只能结合胃内残留和空肠尚未吸收的PQ,思密达的吸附作用受到限制。我们前期研究显示在PQ中毒大鼠胃排空之前(百草枯中毒后10 min)进行思密达灌胃,思密达干预组的大鼠PQ血浆浓度较染毒对照组均显著降低(P<0.05或 P<0.01),有力证实思密达发挥吸附毒物的作用与给药时间密切相关,给药越早,降低血浆浓度作用越明显[12]。

综上,该实验证实P在大鼠PQ中毒后30 min给予思密达灌胃能够在一定程度上降低血浆PQ浓度,但不如中毒后10 min思密达灌胃对百草枯中毒大鼠的保护作用理想,实验证实PQ中毒的预后与阻断毒物吸收的救治时间密切相关,提示PQ中毒后必须在机体胃排空之前使用思密达等吸附剂进行彻底的洗胃,才能有效改善患者预后。

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(收稿日期:2013-12-10)