赵邯郸,关淑艳,徐丹丹,刘 双,陈沼汀
(吉林农业大学生命科学学院,长春 130118)
摘要:以玉米(Zea mays L.)自交系H99、丹988、丹598的胚性愈伤组织为材料,利用农杆菌介导的方法将带有pCAMBIA1301-BADH抗盐碱基因转入供试品种的胚性愈伤中, 通过愈伤组织对盐(NaCl)的敏感性试验,确定愈伤组织适宜选择压,同时研究了2,4-D浓度对筛选结果的影响。结果表明,玉米自交系H99在盐筛培养基中NaCl浓度为200 mmol/L,2,4-D浓度为1.0 mg/L时筛选结果最佳。对移栽成活的48棵抗盐转pCAMBIA1301-BADH基因植株,经PCR检测有3株呈阳性,阳性株率达到6.3%,初步证明目的基因已整合到玉米基因组中。
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关键词 :玉米(Zea mays L.);愈伤组织;耐盐性;筛选;NaCl
中图分类号:S513文献标识码:A文章编号:0439-8114(2015)01-0206-04
DOI:10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2015.01.054
Screening Salt Tolerance of Maize Callus
ZHAO Han-dan,GUAN Shu-yan,XU Dan-dan,LIU Shuang,CHEN Zhao-ting
(College of Life Science, Jilin Agricultural University, Changchun 130118,China)
Abstract: pCAMBIA1301-BADH salt tolerance genes were transferred into maize inbred lines H99, Dan 988, Dan 598 embryogenic callus by the Agrobacterium-mediated method. The appropriate selection pressure of callus was determined by callus sensitivity experiments salt (NaCl) and the effects of 2,4-D concentration on screening were studied. The results showed that the screening were best when the maize inbred line H99 in screening medium NaCl concentration of 200 mmol/L, 2,4-D concentration of 1.0 mg/L. The transplanting survival 48 salt tolerance plants were tested by PCR. There were three positive plant with the rate of positive strains of 6.3%. It is indicated that the target gene was integrated into the maize genome.
Key words:maize(Zea mays L.);callus; salt tolerance;screening;NaCl
收稿日期:2014-06-16
基金项目:国家成果转化项目(2013GB2B100125);吉林省科技厅科技支撑项目(20120215);吉林农业大学启动基金项目(201242)
作者简介:赵邯郸(1990-),男,黑龙江绥化人,在读硕士研究生,研究方向为植物分子生物学与基因工程,(电话)15844015266(电子信箱)
zhd0327@sina.com;通信作者,关淑艳(1971-),女,教授,博士,主要从事生物化学与分子生物学研究,(电话)13504467962
(电子信箱)458194095@qq.com。
盐碱地在世界上分布广泛,世界陆地总面积的7.6%为盐碱地[1,2]。中国是世界盐碱地大国之一,约有盐碱地0.27亿hm2[3]。土壤盐碱化是限制农业生产的一个重要环境因素。随着灌溉面积的扩大,因灌溉水质下降及不合理的灌溉方式而引起的土壤次生盐渍化现象也日趋严重[4,5]。因此,对现有作物品种进行改良,培育耐盐作物新类型,已成为十分重要的研究对象。玉米(Zea mays L.)是重要的粮食作物之一,也是最佳的饲料加工原料,还是重要的工业原料,在世界农业生产上有着举足轻重的地位。在中国人口增加及耕地面积逐渐减少的情况下,对玉米的需求也正在与日俱增。另外,中国是世界玉米生产大国,玉米对中国经济发展和市场稳定具有非常重要的作用。
随着转基因作物商品化的迅猛发展,转基因作物已经深入生活,同时也创造出巨大的效益。因此,培育出具有高产、耐盐、耐旱等优良性状的玉米一直是玉米育种工作者努力追求的奋斗目标[6]。在20世纪90年代,玉米转基因技术研究工作得到了飞速发展,农杆菌介导法、基因枪介导法、PEG法、子房注射法等不仅在玉米上成功使用,而且技术完善成熟[7-9]。农杆菌是自然界中存在的天然基因工程载体,农杆菌介导法与其他转化方法相比,具有转化效率高、可转移较大的DNA片段、转基因植株中外源基因拷贝数低、遗传较稳定及整合机理清楚等优点,所以利用农杆菌介导法改良粮食作物的产量及性状一直是研究的热点。
本试验以玉米自交系H99、丹988、丹598的胚性愈伤组织为材料,利用农杆菌介导的方法将带有pCAMBIA1301-BADH的抗盐碱基因转入玉米胚性愈伤中,通过愈伤组织对NaCl的敏感性试验,确定了筛选抗盐基因玉米愈伤组织的有效选择压,研究了2,4-D浓度对筛选结果的影响,以期为后续遗传转化研究奠定基础,为玉米基因育种研究提供基础试验数据[10]。
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1 外植体 采用玉米自交系H99、丹988、丹598的胚性愈伤组织作为遗传转化的受体进行转化,3份材料由吉林农业大学植物生物技术中心实验室提供。
1.1.2 菌种、质粒 农杆菌菌株EHA105、质粒pCAMBIA1301-BADH,均由吉林农业大学植物生物技术中心实验室保存。
1.1.3 培养基
1)基本培养基:N6培养基。
2)诱导培养基:N6培养基+700 mg/L L-脯氨酸+500 mg/L水解酪蛋白+2 mg/L 2,4-D。
3)继代培养基:N6培养基+1.0 mg/L 2,4-D。
4)筛选培养基:N6培养基+不同浓度2,4-D+不同浓度NaCl。
以上培养基中均含4%蔗糖和0.8%琼脂,pH 5.8。
1.2 试验方法
1.2.1 培养材料的处理 取经人工套袋授粉10~15 d的饱满且无病虫害的玉米雌幼穗扒去最外层数片苞叶,留3~5个苞叶,切取雌果穗头部无子粒部分,用75%乙醇浸泡10 min,扒去所有苞叶及花丝后再用50%的次氯酸钠溶液浸泡15~20 min,然后将果穗置于超净工作台上,用无菌水冲洗3~4次,并削去中部子粒的上面1/3胚乳,用解剖针挑出大小约1.5~2.0 mm的幼胚。
1.2.2 玉米幼胚愈伤组织的诱导和继代 取剥离玉米穗中部子粒的幼胚,将盾片向上接种于诱导培养基上。分别将H99、丹988、丹598玉米自交系的玉米幼胚接种到20个皿中,每个培养皿中接种30个盾片,从诱导出的愈伤组织中挑选不透明、淡黄色、颗粒状的胚性愈伤组织夹碎到2~3 mm大小,每皿接种30块,视各基因型产生的愈伤组织质量的差异,扩繁的数量也不同,以满足后续试验需求为宜。每15 d继代1次,共继代4次。
1.2.3 农杆菌转化 将愈伤组织进行预培养,并用含有质粒pCAMBIA1301-BADH的农杆菌菌株划板于YEP固态培养基(含1 mg/L Kan)中培养,挑单菌落接种于5 mL YEP液态培养基(含1 mg/L Kan)中,28 ℃振荡过夜培养,隔天放入50 mL YEP液态培养基中至其对数生长期OD值为0.5~0.6,离心收集菌体将其重悬于侵染液中备用,将预培养愈伤组织置于重悬后的菌液中,浸泡25 min,轻摇振荡,倒掉菌液,将外植体放入铺有无菌滤纸的培养皿中,吸干愈伤组织表面多余的菌液,然后转入共培养培养基(含200 μg/L As),黑暗条件下培养3 d。
1.2.4 盐胁迫培养 将诱导培养基上获得的3个品种H99、丹988、丹598的胚性愈伤组织接种到不同浓度的盐胁迫筛选培养基上,NaCl浓度梯度依次为0、50、100、150、175、200、250、275、300 mmol/L, 2,4-D浓度梯度依次为0、1.0、2.0、3.0 mg/L,每个梯度设置3次重复。以不添加NaCl和2,4-D的培养基为对照,20 d后及时统计愈伤组织存活率。根据愈伤组织存活率,确定愈伤组织最适宜的选择压。将筛选后的愈伤组织转至分化培养基,分化出的苗转至生根培养基[11]。
愈伤组织存活率=存活的愈伤组织块数/接种的愈伤组织块数×100%。
1.3 PCR检测
取抗性植株的叶片按照CTAB方法提取植物基因组DNA,进行PCR检测。反应体系为25 μL。扩增反应参数:94 ℃预变性5 min,94 ℃变性55 s,退火50 ℃ 55 s,72 ℃延伸55 s,72 ℃后延伸10 min,35个循环。扩增产物于1.0%琼脂糖凝胶电泳,溴化乙锭染色,紫外透射仪分析。
2 结果与分析
2.1 不同NaCl浓度对玉米自交系筛选结果的影响
用玉米自交系H99、丹988、丹598胚性愈伤组织进行耐盐性研究,观察统计各处理愈伤组织成活情况,用愈伤组织成活率分析玉米愈伤组织的耐盐性敏感浓度,结果见图1。由图1可知,随着培养基中NaCl浓度的升高,各基因型的愈伤组织存活率明显下降,当NaCl浓度达到300 mmol/L时,愈伤组织全部死亡;NaCl的半致死浓度稍高于175 mmol/L,对筛选结果有较明显影响;在NaCl浓度为200 mmol/L时盐筛结果最佳,这3种不同基因型玉米自交系中,H99的盐筛结果最佳。
2.2 不同2,4-D浓度对玉米自交系筛选结果的影响
如图2所示,2,4-D浓度过高或过低都会影响不同基因型玉米自交系愈伤组织在筛选培养基中的存活率,其中2,4-D浓度为1.0 mg/L时盐筛结果最佳。2,4-D浓度不同对不同基因型玉米自交系的筛选结果也不相同。由不同浓度的2,4-D对3种基因型玉米自交系愈伤组织筛选的影响可知,其对H99基因型的盐筛结果的影响最明显。
2.3 抗性植株的PCR检测
用CTAB法提取的玉米再生植株叶片DNA进行PCR扩增,转化玉米获得转BADH基因再生植株,利用BADH引物按照PCR体系进行扩增,扩增产物的电泳分析结果(图3)表明,转基因植株扩增出1 500 bp左右的特异条带,与阳性质粒作模板的PCR扩增条带大小吻合,而非转基因的对照植株则无此特异条带,初步证明BADH基因已整合到再生玉米植株中。经过筛选、分化、生根、移栽,有48株转基因植株成活,通过在大棚种植,经过PCR检测,其中阳性植株为3株,PCR阳性植株率为6.3%。
3 小结与讨论
植物组织和细胞在培养过程中可产生多种变异,若在加有高浓度盐分的培养基上培养愈伤组织和细胞,有可能筛选出耐盐细胞并再生出植株[12,13]。这种方法近10多年来受到国内外学者的重视,并取得了一定的进展,现已筛选出烟草、水稻、首蓓、番茄、芦苇等植物的耐盐变异体并再生了植株[14]。玉米是一种对盐分中度敏感的作物,选出具有分化能力高、耐盐性的愈伤组织是筛选出耐盐植株的关键。许多材料的愈伤组织或培养细胞经过长期的耐盐筛选后,往往丧失再生植株的能力,本试验过程中也遇到了同样的现象。NaCl浓度过低,不易筛选出耐盐性较高的愈伤组织,同时也会造成过多的非转化植株存活,增加后续转化株的鉴定工作量[15-17]。相反NaCl浓度过高,会扼杀已转化的细胞,筛选出的愈伤组织不能再生植株,且筛选频率很低。为了获得耐盐再生植株,本试验采用了尽量减少耐盐愈伤组织继代次数和降低培养基中NaCl浓度等措施,取得了一定成效[18]。
本研究通过统计玉米自交系H99、丹988、丹598胚性愈伤组织在含有不同浓度NaCl及不同浓度2,4-D的筛选培养基上的愈伤存活率的情况,结果表明,当NaCl浓度为200 mmol/L,2,4-D浓度为1.0 mg/L时玉米愈伤组织存活率最高,其中H99、丹988、丹598 3种基因型中H99的愈伤组织存活率最高。转化玉米获得转BADH基因再生植株,阳性植株率达6.3%,对于其他相关因素还需进一步的分析。
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参考文献:
[1] 王丽燕,赵可夫. 玉米幼苗对盐胁迫的生理响应[J]. 作物学报,2005,31(2):264-266.
[2] 王 宁.不同玉米品种苗期对盐胁迫的生物学响应及耐性机制研究[D].沈阳:沈阳农业大学,2009.
[3] BIAN J,TANG J,LIN N.Relationship between saline-alkali soil formation and neotectonic move-ment in Songnen Plain,China[J].Environmental Geology,2008,55(7):1421-1429.
[4] 李佐同,高聚林,王玉凤,等.硅对NaCl胁迫下玉米幼苗生理特性的影响[J].玉米科学,2011(5):73-76.
[5] ASHRAF M,SAEED M M. Effect of improved cultural practices on crop yield and soil salinity under relatively saline groundwater applications[J]. Irrigation and Drainage Systems,2006,20(1):111-124.
[6] 胡笑形,罗 艳.2011年全球转基因作物发展概况[J]. 精细与专用化学品,2012,20(4):17-18.
[7] 赫福霞,郎志宏,张 杰,等.转Bt cry1Ah/2mG2-epsps双价基因抗虫/耐除草剂玉米研究[J]. 作物杂志,2012(6):29-33.
[8] ARMSTRONG C L, GREEN C E. Establishment and maintenance of friable embryo genic maize callus and involvementofL-proline[J]. Planta,1985,164:207-214.
[9] REUTER H, MIDDLELHOFF U, GRAEF F, et al. Information system for monitoring environmental impacts of genetically modified organisms[J]. Environmental Science and Pollution Research,2010,17(8):1479-1490.
[10] 邢 勇,张小冰,燕海梅,等.盐胁迫对转基因玉米种子萌芽及幼苗生长的影响[J].广东农业科学,2012,39(10):19-21.
[11] 黄 璐,卫志明.农杆菌介导的玉米遗传转化[J].实验生物学报,1999,32(4):381-378.
[12] 朱新广,张其德,匡廷云.NaCl对小麦光合功能的伤害主要是由离子效应造成的[J].植物学通报,2000,17(4):360-365.
[13] 杨爱芳,姜素云,胡孝瑞,等.鲁梅克斯离体培养及耐盐植株的再生[J].草业学报,2005,14(2):43-47.
[14] 尹祥佳,翁建峰,谢传晓,等.玉米转基因技术研究及其应用[J].作物杂志,2010(6):1-9.
[15] SIDOROV V, GILBERTSON L, ADDAE P, et al. Agrobacterium-mediated transformation of seedling-derived maize callus[J]. Plant Cell Reports, 2006,25(4):320-328.
[16] 王宏伟,梁业红,史振声,等.农杆菌介导玉米幼胚遗传转化体系的研究[J].玉米科学,2011,19(3):73-75.
[17] 苏 金,朱汝财.渗透胁迫调节的转基因表达对植物抗旱耐盐性的影响[J].植物学通报,2001,18(2):129-136.
[18] 权瑞党,尚 梅,张举仁.农杆菌介导的玉米自交系愈伤组织转化条件的优化[J].植物生理与分子生物学学报,2003,29(3): 245-250.
(责任编辑 赵 娟)