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金属离子对纤维素酶降解汽爆秸秆的影响

  • 投稿苗久
  • 更新时间2015-09-22
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李德莹a,田毅红b,龚大春c

(三峡大学,a.材料与化工学院;b.生物与制药学院;c.新能源研究院,湖北 宜昌443002)

摘要:以汽爆秸秆为底物,分别考察添加Fe2+、Mg2+、Cu2+和Fe3+四种金属离子对纤维素酶解性能的影响。结果表明,金属离子的种类、用量均会影响纤维素的酶解效率。其中Fe2+、Cu2+对纤维素降解有促进作用,当Fe2+浓度为0.6 mg/mL时,对纤维素降解促进作用最明显。Mg2+和Fe3+则会抑制纤维素酶解。考察了纤维素酶在水解过程中的吸附过程,添加Fe2+可加快纤维素酶的吸附,促进纤维素酶与纤维素的有效结合。

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关键词 :纤维素酶;金属离子;水解;激活;吸附

中图分类号:Q814.9文献标识码:A文章编号:0439-8114(2015)03-0546-04

纤维素是一种可再生资源,它来源于农业废弃物如稻草、稻壳、麦秆等,木材废弃物如木屑、树皮以及城市废弃物等。全国每年仅农作物秸秆约有7亿t,其中作为农村燃料消耗2亿t。若将其余5亿t用来生产纤维素乙醇,可产乙醇7 000万t,若再加上木材工业下脚料、制糖造纸工业下脚料和城市废纤维垃圾等,纤维素乙醇的生产原料非常丰富,生产潜力巨大。目前,生物乙醇主要用于制备乙醇汽油。生物乙醇还将广泛应用于燃料电池市场,作为燃料电池动力的主要来源。此外,乙醇是生产乙烯的理想原料,随着石油资源的枯竭,乙醇必将代替石油成为乙烯工业的主要原料,在化学合成工业上发挥巨大的作用。因此,无论从短期的燃料市场来看,还是从长期的化纤合成工业来分析,生物乙醇都将拥有广阔的市场前景,是发展潜力巨大的绿色能源[1-3]。

木质纤维素水解是纤维素乙醇的关键技术之一。利用纤维素酶进行纤维素水解,可以避免酸水解工艺的高温高压苛刻条件,也可以防止对生产设备的腐蚀,但其缺点是反应速度慢、生产周期长、酶成本高。因此,设法提高纤维素酶的活力可以提高转化率,降低生产成本。目前报道较多的金属离子对纤维素酶的影响基本都采用游离酶作为考察对象,没有涉及到反应体系中的酶,对实际应用意义不大[4-8]。本研究考察纤维素水解过程中金属离子的调控效应,以期提高纤维素酶的利用率。

1材料与方法

1.1材料

汽爆秸秆由三峡大学材料与化工学院实验室提供。

1.2方法

1.2.1汽爆秸秆的处理用80 ℃左右的热水蒸煮汽爆秸秆,洗去其中含有的糠醛等杂质,将滤渣收集并烘干,用研钵研碎并过40目筛。处理完成后,用密封袋贮藏。

1.2.2金属离子对汽爆秸秆水解的影响准确称取过筛后汽爆秸秆渣10 g和0.35 g纤维素酶置于250 mL锥形瓶中,加入100 mL pH 4.8的乙酸-乙酸钠缓冲液充分搅拌,添加不同种类、浓度的金属离子,于50 ℃恒温振荡水浴48 h,测还原糖含量,计算水解率。

1.2.3金属离子对酶与底物吸附的影响每隔0、5、10、15、30、60、90 min吸取水解液2 mL于离心管中,10 000 r/min离心5 min。取上清液适当稀释后测蛋白质含量。溶液中初始蛋白质含量与滤液中蛋白质含量之差即为吸附的蛋白质含量。

1.2.4测定方法还原糖的测定采用DNS法[9]。纤维素酶活性测定采用滤纸酶活法[10],即pH 4.8、50 ℃下1 g固体酶1 h内水解滤纸生成1 mg的葡萄糖为一个滤纸酶活单位(FPA)。蛋白质含量测定采用考马斯亮蓝法[8]。所有的数据测定做2个平行样,取平均值。纤维素结构测定:将水解48 h后的水解液抽滤,收集滤渣,置于烘箱中干燥。干燥后用密封袋储存样品,待进行红外光谱检测。红外分析采用KBr压片法, 扫描范围4 000 ~400 cm-1。

2结果与分析

2.1Fe3+、Mg2+对汽爆秸秆酶解的影响

由图1、图2可知,在Fe3+、Mg2+浓度分别为0.4 、0.8 、1.2 、1.6 mg/mL的情况下,随着水解时间的增加,汽爆秸秆的水解率逐渐增大,在相同的水解时间里,与对照组相比,加入Fe3+、Mg2+的浓度越大,水解率越低。这说明Fe3+、Mg2+对纤维素酶解有抑制作用,且随金属离子浓度的增大,抑制作用越明显。Fe3+的抑制作用可能是由于Fe3+的存在不利于底物与酶的活性中心相结合;Mg2+的抑制机理与Fe3+的抑制机理相似[11-12]。

2.2Fe2+对汽爆秸秆酶解的影响

如图3所示,随水解时间增加,汽爆秸秆的水解率逐渐增大,在相同的水解时间里,与对照组相比,当加入Fe2+浓度为0.2 mg/mL时,其水解率较低,当加入Fe2+浓度为0.4、0.6 mg/mL时,水解率增大,且0.6 mg/mL Fe2+对汽爆秸秆的水解促进作用最强,当Fe2+浓度继续增大到1.0 mg/mL,水解率反而降低。这种现象可能是由于当Fe2+浓度较低时,Fe2+在酶与底物之间起了连桥作用,形成了E-M-S复合物。从而更有利于底物与酶的活性中心必需基团的结合,因而使酶活力得到提高。而当离子浓度过高时,激活作用逐渐减弱,甚至呈现抑制作用。

2.3Cu2+对汽爆秸秆酶解的影响

如图4所示,与对照组相比,在水解相同的时间里,当加入Cu2+浓度为0.2、0.6、1.0 mg/mL时,水解率都有所增加,其中Cu2+浓度为0.6 mg/mL时,水解率增加最大,而当Cu2+浓度增加为1.4 mg/mL,水解率变化不大,若Cu2+浓度继续增大,可能会抑制纤维素水解。低浓度的Cu2+对酶解过程的促进作用可能是由于Cu2+的存在更有利于底物与酶的活性中心相结合,从而使酶活力得到提高,水解率也相应增大。而当其浓度增大到一定值,由于Cu2+的重金属作用,使蛋白质变性,酶逐渐失活,对酶解过程产生抑制作用。

2.4金属离子对纤维素酶吸附的影响

纤维素的酶水解是固液非均相反应,纤维素酶首先扩散到底物纤维素的表面被吸附,然后将纤维素水解为可发酵糖[13]。纤维素酶的吸附存在平衡状态,即吸附达到一定程度后,吸附量达到饱和。研究表明,纤维素酶在纤维上的吸附平衡时间约30~60 min[14,15]。因此,纤维素酶对纤维素的可及性是决定水解起始速率的关键因素。为探讨金属离子对纤维素降解的影响机制,比较加入金属离子后对纤维素酶吸附的影响情况。水解过程中反应体系内蛋白质含量测定结果如图5所示。由图5可见,随着纤维素水解反应的进行,水解液中蛋白质含量先增大后逐渐减小,在30 min后水解液中蛋白质含量几乎不变。这表明在反应刚开始阶段,由于汽爆秸秆中原含有一定量的蛋白质,随着振荡,这些蛋白质逐渐溶解到反应液中,使得水解液蛋白质含量增加,而之后蛋白质含量又迅速下降,这表明纤维素酶开始吸附到纤维素中,到30 min左右达到吸附平衡。添加Fe2+后,加快了纤维素酶的吸附速度,使纤维素酶易于吸附到纤维素中,这也与加入0.6 mg/mL Fe2+能够提高汽爆秸秆水解率的结果相符,说明Fe2+可以促进底物与酶的结合。

2.5不同水解条件下纤维素结构变化

由以上的研究了解到Fe2+对纤维素水解有一定的促进作用。采用有机溶剂处理的方法脱除汽爆秸秆的木质素,然后添加Fe2+,发现其水解率可以达到46.6%。分别将汽爆秸秆、汽爆秸秆添加Fe2+和脱木质素的汽爆秸秆添加Fe2+水解以后得到的残渣进行红外光谱分析,得到的图谱如图6。图谱B、C与A比较可知,3 350 cm-1、2 906 cm-1处的振动峰增强,说明有更多的纤维素的β-1,4葡萄糖苷键断裂,降解为还原糖,与水解率研究的结果一致,添加Fe2+对于纤维素和脱除木质素的纤维素的水解都有促进作用。不同处理条件下,纤维素样品的红外光谱图相似,只是部分吸收峰的强度发生了变化,证明没有新的化学结构和功能性基团生成,试样的主体化学结构没有明显变化。有文献[16-18]表明,纤维素酶的吸附与木质素有关,从红外图谱C上得知,木质素特征吸收峰(1 505 cm-1)减弱较明显,木质素被脱除,但添加Fe2+后脱木质素纤维素水解率较之未脱木质素仍有较大幅度提高,其促进作用可能源于金属离子导致纤维素酶蛋白的空间构象变化,从而影响其生物活性。

3结论与讨论

不同金属离子在不同浓度下对汽爆秸秆酶解过程有不同程度的抑制或促进作用。Fe2+、Cu2+在一定浓度范围内对酶解过程有一定的促进作用,Fe3+和Mg2+则会抑制纤维素酶解过程。其中,Fe2+的促进作用最明显,在pH 4.5、汽爆秸秆10 g,酶活性12 FPU/g,Fe2+浓度0.6 mg/mL的100 mL溶液50 ℃酶解48 h后,纤维素的水解率比不添加金属离子的提高18.60%,采用脱除木质素的汽爆秸秆,其水解率可以达到46.6%。底物中木质素含量越低,金属离子对纤维素转化率的提高幅度也越大,通过考察添加Fe2+后纤维素对纤维素酶吸附的情况以及对水解后纤维素渣的红外光谱分析,表明Fe2+能在一定程度上促进纤维素酶与底物纤维素的有效结合,从而对酶解过程起到促进作用。

此次研究了不同金属离子在酶催化反应体系中对纤维素酶活性的影响,其结果与游离酶的影响趋势以及他人的研究结果不尽一致,可能的原因为设定的离子浓度不同或者作为不同来源的纤维素酶激活剂的特定金属离子也不同,因而,同种离子对不同来源的纤维素酶活性的影响以及金属离子对纤维素酶活性影响的机理等尚需进一步研究。

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参考文献:

[1] 彭姿,谭兴,熊兴耀,等.木质纤维素糖化前预处理新技术研究进展[J].中国酿造,2013,32(1):1-4.

[2] 陈洪章,邱卫华.秸秆发酵燃料乙醇关键问题及其进展[J].化学进展,2007,19(7/8):1116-1121.

[3] MAEDA R N, BARCELOS C A, ANNA L M M S,et al. Cellulase production by Penicillium funiculosum and its application in the hydrolysis of sugar cane bagasse for second generation ethanolproductioby fed batch operation[J]. Journal of Biotechnology,2013,163(1):38-44.

[4] 冯培勇,常迪,杨立红.一株绿色木霉产纤维素酶的性质研究[J].食品科学,2006,27(12):185-187.

[5] 安刚,陶毅明,龙敏南,等.金属离子对白蚁纤维素酶活力的影响[J].厦门大学学报(自然科学版),2008,47(2):107-109.

[6] 张红娟,岳淑宁,张强,等.金属离子对4PCA饲料酶中纤维素酶活性的影响[J].技术与市场,2008(12):6-7.

[7] 管国强,何林富,张志才,等.金属离子对灵芝纤维素酶和木聚糖酶活性的作用[J].江西农业学报,2008,20(6):27-30.

[8] 包晓峰.纤维素酶降解生物质生物活性研究及金属离子对纤维素酶活力的影响[D].南京:南京理工大学,2002.

[9] 董晓燕.生物化学实验[M].北京:化学工业出版社,2003.

[10] 刘洁,李宪臻,高培基.测定纤维素酶活力方法评述[J].工业微生物,1994,24(4):27-32.

[11] 张洪鑫,陈小泉,蒋玲玲.金属离子对纤维素酶内切酶和外切酶活性的影响[J].纤维素科学与技术,2011,19(4):6-13.

[12] 王娜娜,姚秀清,张全,等.金属离子及表面活性剂对纤维素酶水解预处理玉米秸秆的影响[J].科学技术与工程,2011,11(20):4913-4916.

[13] 詹小明,夏黎明.纤维素酶在玉米芯上的吸附及其水解作用[J].林产化学与工业,2005,25(3):76-80.

[14] LYND L R,WEIMER P J,VAN ZYL W H, et al. Microbial cellulose utilization: fundamentals and biotechnology[J].Microbiology and Molecular Biology Reviews,2002,66(3):506-515.

[15] TU M B, CHANADRA R P, SADDLER J N. Recycling cellulases during the hydrolysis of steam exploded and ethanol pretreated Lodgepole pine[J].Biotechnology Progress,2007,23(5):1130-1137.

[16] BORJESSON J. Effect of poly(ethylene glycol) on enzymatic hydrolysis and adsorption of cellulase enzymes to pretreated lignocellulose[J]. Enzyme and Microbial Technology,2007,41 :186–195.

[17] 张建安,张小勇,韩润林,等.木素对纤维素酶解的影响及纤维素酶解[J].化学工程,2000,28(1):37-43.

[18] 姚兰,赵建,谢益民,等.木质素结构以及表面活性剂对木质素吸附纤维素酶的影响[J].化工学报,2012,63(8):2612-2616.