论文网
首页 理科毕业农学毕业论文正文

辣椒疫病生防菌的筛选、鉴定及其抑菌机理初探

  • 投稿苗久
  • 更新时间2015-09-22
  • 阅读量844次
  • 评分4
  • 23
  • 0

吴 辉,潘梦武,高易宏,李建文,姚少林,孙文秀

(长江大学生命科学学院,湖北 荆州 434025)

摘要:采用平板稀释法和平板对峙试验,从武汉、荆州、宜昌和荆门等地的辣椒根际土壤中分离到185株细菌,筛选到1株具有高效拮抗辣椒疫霉菌(Phytophthora capsici)的生防菌Bs04。通过形态学观察、生理生化指标测定、16S rDNA序列测定及进化树构建,确定菌株Bs04为枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)。Bs04对辣椒疫霉菌丝生长抑制率达80%,同时对烟草黑胫病菌(Phytophthora parasitica var. nicotiana)、棉花黄萎病菌(Verticillium dahliae)、棉花枯萎病菌(Fusarium oxysporum f.sb. vesinfectum)和黄瓜立枯病菌(Rhizoctonia solani)具有明显的抑制作用。利用光学显微镜观察Bs04对辣椒疫霉菌丝形态的影响,发现菌丝分支增多、顶端畸形、原生质浓缩及生长缓慢等现象,表明Bs04具有显著的抑菌作用。

教育期刊网 http://www.jyqkw.com
关键词 :辣椒疫霉菌(Phytophthora capsici);生防菌;鉴定;抑菌机理

中图分类号:S436 文献标识码:A 文章编号:0439-8114(2015)07-1596-04

DOI:10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2015.07.016

辣椒疫病由辣椒疫霉菌(Phytophthora capsici)引起,是重要的辣椒根茎病害之一,在中国及世界其他国家辣椒生产区发生严重,给辣椒生产造成巨大的经济损失。对于辣椒疫病的防治大多采用化学防治,而大量使用化学药剂导致了环境的严重污染,对消费者的身体健康产生了不利影响。目前,由于辣椒抗疫病品种较少,且多为中抗或不耐病品种,难以有效地控制辣椒疫病。因此,寻找安全有效的防治措施成为控制辣椒疫病的一个亟待解决的问题。

植物病害的生物防治是利用有益生物和生物代谢产物对植物病害进行有效防治的技术与方法,具有无毒、无害、无污染和高效等优点,受到了研究者的青睐。关于辣椒疫病的生物防治国内外均有相关研究报道[1-4],但主要集中在生防菌的防效和应用上,对其控病机理研究却较少。在此基础上,针对湖北省辣椒疫病发生严重的状况,本研究从辣椒根际土壤中分离生防菌株,并对其进行鉴定,初步探讨生防菌的抑菌机理,为有效地防治辣椒疫病奠定基础。

1 材料与方法

1.1 供试菌株和培养基

辣椒疫病菌(Phytophthora capsici)、烟草黑胫病菌(Phytophthora parasitica var. nicotiana)、棉花黄萎病菌(Verticillium dahliae)、棉花枯萎病菌(Fusarium oxysporum f.sb. vesinfectum)、黄瓜立枯病菌(Rhizoctonia solani)均由长江大学生命科学院实验室保存。培养基为牛肉膏蛋白胨培养基(NA)、马铃薯葡萄糖培养基(PDA)。

1.2 土样采集和处理

从武汉、荆州、宜昌和荆门等辣椒种植区疫病发生严重的田地,利用五点采样法从生长健康辣椒根际采集土样。采样时铲去表层5 cm土层,取新鲜土样500 g,用保鲜袋保存。称取土样10 g加入装有90 mL无菌水的三角瓶中(内装玻璃珠若干),30 ℃、120 r/min振荡30 min,静置后获得土壤悬液。

1.3 生防细菌的筛选

将土壤悬液稀释成10-5、10-6、10-7浓度,吸取不同稀释度的土壤悬液100 μL涂布于NA培养基上,置于28 ℃培养48 h,挑取颜色、形态等不同的细菌单菌落并纯化、保存。采用平板对峙法测定分离到的细菌对辣椒疫霉的抑菌活性。将辣椒疫霉菌在PDA平板上活化,用打孔器在菌落边缘打取菌块(直径6 mm),接种到PDA平板中央。培养1 d后,在距离辣椒疫霉菌块2 cm处的4个对接点接种待测细菌,28 ℃培养,5 d后观察抑菌结果,每个处理设3次重复。

1.4 拮抗菌株的鉴定

将筛选到的抑菌效果较好的菌株进行菌落形态观察、显微形态观察、革兰氏染色、芽孢染色、水解淀粉试验、甲基红试验(M.R)、V.P试验、柠檬酸盐试验、接触酶反应试验、明胶液化试验、运动性试验等主要形态和生理生化指标鉴定[5,6]。参照文献[7]方法提取疑似枯草芽孢杆菌基因组DNA。根据已报道的枯草芽孢杆菌16S rDNA的保守区序列设计引物BsF(5′-TGCACACACCGCCCGT-3′)和BsR(5′-GGGTTGCCCCATTCG-3′),以枯草芽孢杆菌疑似株基因组为模板,进行PCR扩增。PCR反应程序为:94 ℃预变性4 min;94 ℃变性1 min,54 ℃退火30 s,72 ℃ 延伸1 min,共30个循环;最后72 ℃延伸10 min。PCR产物经试剂盒纯化后测序,将测序结果与GenBank数据库中的序列进行对比分析,利用MEGA4.1软件构建进化树。

1.5 拮抗菌株的抑菌谱试验

拮抗菌对各试验病原真菌的拮抗作用均采用平板对峙法,各试验重复3次。28 ℃下培养5 d后,测量抑菌带的宽度和菌落半径,计算拮抗菌对病原真菌生长的抑制率。对病菌生长的抑制率=(对照菌落半径-处理菌落半径)/对照菌落半径×100%。

1.6 拮抗菌株对辣椒疫病菌菌丝形态的影响

将辣椒疫病菌在PDA培养基上接种培养3 d后,用打孔器打取直径5 mm的菌块置于盛有20 mL PDA培养基的无菌培养皿中,28 ℃培养2 d。将培养好的辣椒疫病菌菌块分别用拮抗菌株的无菌培养滤液和菌体悬浮液处理24 h后,以无菌水处理为对照,挑取菌丝在倒置显微镜下观察其形态,每处理重复3次。

2 结果与分析

2.1 拮抗细菌的筛选结果

从健康辣椒根际土壤中共分离到185株细菌,从中挑取菌落形态、颜色与枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)相似的细菌48株。采用平板对峙法测定上述48株细菌的抑菌活性,结果表明有29株能够抑制辣椒疫霉的生长,但抑菌程度不同。其中抑菌圈直径为7.0~8.0 mm的有1株,为5.0~7.0 mm的有6株,为3.0~5.0 mm的有22株。编号为Bs04的菌株抑菌效果最强(图1)。

2.2 拮抗菌株Bs04的鉴定结果

2.2.1 形态学和生理生化指标 菌株Bs04在NA平板上培养2 d后,菌落圆形或椭圆形,乳白色,中央凹陷,表面干燥,有褶皱,不透明。菌体为杆状,大小为(0.7~0.8) μm×(2.0~3.0) μm,革兰氏染色阳性,其他生理生化指标鉴定结果见表1。

2.2 16S rDNA序列与同源性分析 以拮抗菌株Bs04的基因组DNA为模板,用BsF和BsR为引物,进行PCR扩增,经琼脂糖凝胶电泳检测到1条大小约1 500 bp的清晰条带(图2),测序结果为1 538 bp。将测序结果在NCBI GenBank上进行序列比对(比对号lcl28017),发现其与枯草芽孢杆菌16S rDNA序列的相似性高达99%,初步确定拮抗菌株Bs04为枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)。将菌株Bs04的16S rDNA序列上传GenBank,获得基因序列号KF725636,并利用MEGA4.1软件进行聚类分析,构建进化树。由图3可知,Bacillus subtilis(KF725636)与Bacillus subtilis(KC506778.1)处于一个小分支,同时与另外两个枯草芽孢杆菌位于一个大分支。由此,进一步表明拮抗菌株Bs04为枯草芽孢杆菌。

2.3 对其他病原真菌的拮抗作用

为了研究拮抗菌株Bs04的生防潜力,采用平板对峙法对其抑菌谱进行了测定。结果表明,拮抗菌株Bs04对供试病原真菌有较高的拮抗活性。由表2可知,拮抗菌株Bs04对辣椒疫霉菌、烟草疫霉菌的抑制率达70%以上,对其他病原真菌的抑制率也在40%以上。表明菌株Bs04的抑菌谱宽,生防潜力较大,具有良好的应用前景。

2.4 对辣椒疫霉菌菌丝形态的影响

由图4可知,用去离子水处理的辣椒疫霉菌丝形态饱满,细胞壁光滑,菌丝能正常生长并扩展(图4a)。经拮抗菌株Bs04菌体悬浮液和无菌滤液处理后,辣椒疫霉菌丝形态发生明显变化,菌丝分支增多,顶端出现畸形,生长缓慢(图4b与图4c);大多数菌丝还出现了细胞壁加厚,原生质浓缩呈球形或椭圆形的现象,菌丝中间出现许多类似厚壁孢子的细胞(图4d)。

3 小结与讨论

近年来,辣椒疫病发生日益严重,给中国的农业生产造成了较大的危害。对于辣椒疫病的防治,长期以来使用化学农药进行防治,导致农药残留污染、增强病原菌的抗药性等不利影响。辣椒疫病作为典型的土传病害,应用生防菌对其进行防治则显得至关重要。芽孢杆菌是一类重要的用于土传性病害的生防细菌。多粘类芽孢杆菌、短小芽孢杆菌和枯草芽孢杆菌[8]等能够抑制多种病原菌的生长,对其引起的病害起到一定的防治作用。

枯草芽孢杆菌是革兰氏阳性菌,具有生长快、营养要求简单、对人畜无害、能够抑制多种植物病害、不易产生抗药性等优点,是目前应用广泛的生防菌[9]。枯草芽孢杆菌能够有效抑制玉米串珠镰孢菌[10]、棉花枯萎病菌[11]、稻瘟病菌[12]等,其抗菌谱较广。本研究通过平板稀释法从辣椒根际土壤中分离到了枯草芽孢杆菌Bs04,采用平板对峙法发现其对辣椒疫霉菌具有较强的拮抗作用,且对其他多种病原真菌具有明显的抑菌作用,具有较广的抗菌谱,这与前人的研究结果一致[13-15]。同时,枯草芽孢杆菌Bs04显著影响辣椒疫霉菌丝形态,能抑制菌丝的生长和扩展,阻止病原菌的进一步侵染。枯草芽孢杆菌作为目前应用较为广泛的生防细菌之一,其主要通过根际定殖、分泌抗生素及拮抗蛋白等达到防病目的。本研究中菌株Bs04的防病机理有待进一步研究,而对于其在生产上的应用效果还有待于深入探索。

教育期刊网 http://www.jyqkw.com
参考文献:

[1] 马晓飞,刘长远,赵奎华,等.辣椒疫病生防菌株鉴定及控病机理研究[J].中国农学通报,2012,28(10):136-141.

[2] 梅新兰,赵青云,谭石勇,等.辣椒疫病拮抗菌株筛选、鉴定及其防效[J].应用生态学报,2010,21(10):2652-2658.

[3] LIU H X, LI S M, LUO Y M, et al. Biological control of Ralstonia wilt, Phytophthora blight, Meloidogyne root-knot on bell pepper by the combinationof Bacillus subtilis AR12, Bacillus subtilis SM21 and Chryseobacterium sp. R89[J].European Journal of Plant Pathology, 2014, 139(1):107-116.

[4] LIM J H, KIM S D. Biocontrol of Phytophthora blight of red pepper caused by Phytophthora capsici using Bacillus subtilis AH18 and B. licheniformis K11 formulations[J]. Journal Korean Soc Appl Biol Chem. 2010,53(6):766-773.

[5] 赵 斌,何绍江.微生物学实验[M].北京:科学出版社,2002.

[6] 东秀株,蔡妙英.常见细菌系统鉴定手册[M].北京:科学出版社,2001.

[7] KATAOKA M,UEDA K,KUDO T,et al.Application of the variable region in 16S rDNA to create an index for rapid species identification in the genus Streptomyces [J].FEMS Microbiology Letters,1997,151:249-255.

[8] 徐建宏,王建伟,胡晓丹,等.小麦赤霉病菌拮抗菌AF0907的分离鉴定及其拮抗特性[J].江苏农业学报,2013,29(3):517-522.

[9] ASAKA O,SHO DA M.Biocontrol of Rhizoctonia solani damping-off tomato with Bacillus subtilis RB14[J]. Appl Environ Mircrobiol,1996,62(11):4081-4085.

[10] BACON C W,YATES I E, HINTON D M, et al. Biological control of Fusarium moniliforme in maize[J]. Environmental Health Perspectives,2001, 109(S2):325-332.

[11] 曹 君,高智谋,潘月敏,等.枯草芽孢杆菌BS菌株和哈茨木霉TH-1菌株对棉花枯黄萎病的拮抗作用[J].植物病理学报,2005,36(6):170-172.

[12] 穆长青,刘 雪,陆庆光,等.枯草芽孢杆菌B-332菌株对稻瘟病的防治效果及定殖作用[J].植物保护学报,2007,34(2):123-128.

[13] WIEHITRA L, PUNPEN H, SAMERCHAI C. Growth inhibitory properties of Bacillus subtilis strains and theirmetabolites against the green mold pathogen(Penicillium digitatum Sacc) of citrus fruit[J]. Postharvest Biology and Technology,2008, 48(1):113-121.

[14] EEMAN M, PEGADOB L,DUFR NE Y F. Influence of environmental conditions on the inteffacialorgan isation of fengycin, a bioactive lipopeptide produced by Bacillus subtilis[J]. Journal of Colloid and Interface Science,2009,29:253-264.

[15] CHUNG S,KONG H, BUYER J S, et al. Isolation and partial characterization of Bacillus subtilis ME488 for suppression of soilborne pathogens of cucumber and pepper[J]. Appl Microbiol Biotechno,2008,80:115-123.