论文网
首页 理科毕业农学毕业论文正文

烟碱降解菌SCUEC2菌株的分离及其降解特性

  • 投稿Trix
  • 更新时间2015-09-22
  • 阅读量420次
  • 评分4
  • 49
  • 0

李 阳1,杨振飞1,马婷婷1,陈 涛2,龚传清2,李永辉2,李晓华1

(1.中南民族大学生命科学学院/生物技术国家民委重点实验室,武汉 430074;2.湖北省烟草公司襄阳市公司,湖北 襄阳 441003)

摘要:以烟碱为惟一碳源,从湖北省襄阳市烟草种植土壤中分离得到1株烟碱降解菌,为蒙氏假单胞菌(Pseudomonas monteilii)SCUEC2。在30 ℃下,180 r/min摇床培养,烟碱质量浓度为1.00 g/L时,发酵10 h后烟碱降解率达到88.80%。在30 ℃下,180 r/min摇床培养48 h,烟碱质量浓度为6.00 g/L时,烟碱降解率为82.59%;烟碱质量浓度为7.00 g/L时,烟碱降解率和菌株生长呈下降趋势,烟碱降解率为18.94%。SCUEC2菌株发酵液经HPLC检测,结果显示,烟碱的保留时间为5.25 min左右,在培养到16 h时,烟碱峰峰面积明显减小,并在保留时间为11.79 min左右处出现一个新色谱峰,表明有中间代谢产物产生。

教育期刊网 http://www.jyqkw.com
关键词 :烟碱;生物降解;蒙氏假单胞菌(Pseudomonas monteilii);降解特性

中图分类号:Q939.11+2;S572;S154.3 文献标识码:A 文章编号:0439-8114(2015)07-1586-04

DOI:10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2015.07.013

烟碱俗称尼古丁(nicotine),是烟草中的主要生物碱。烟碱对人体有害,很容易被人体吸收,是吸烟上瘾的主要物质,会引起人体的心血管疾病[1]。烟碱易溶于水,在烟草种植和香烟生产上很容易造成固体和液体的高浓度污染,严重污染环境和威胁人类健康。欧盟已将每千克烟碱含量超过500 mg的烟草废弃物规定为“有毒有害物”,其他一些国家也规定了各自相应的标准[2,3]。因此,烟碱降解成为迫切需要解决的问题,而利用微生物降解烟碱是一种低成本、高效率且对环境影响小的方法[4]。近年来,微生物降解烟碱的研究受到关注,降解烟碱的微生物主要有嗜烟碱节杆菌(Arthrobacter nicotinovorans)[5-8]、假单胞菌属(Pseudomonas sp.)[3,9-13]、中间苍白杆菌(Ochrobactrum intermedium)[1,14]、土壤杆菌属(Agrobacterium sp.)[15-17]、红球菌属(Rhodococcus sp.)[18]、米曲霉(Aspergillus oryzae)[19]等。本研究从湖北省襄阳市烟草种植地土壤分离出1株新菌株蒙氏假单胞菌(Pseudomonas monteilii),具有较高的降解烟碱性能,通过对其降解性能进行研究, 旨在为降低烟叶和烟厂废弃物中烟碱含量提供依据。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 样品 土壤样品采自湖北省襄阳市烟草种植地土壤。

1.1.2 培养基 烟碱培养基:13.30 g K2HPO4,4.00 g KH2PO4,0.10 g(NH4)2SO4,1.00 g酵母粉,10.00 mL微量元素(1.00 g MgSO4·7H2O,0.40 g MnSO4·H2O,0.20 g CaCl2·2H2O,0.20 g CuCl2·2H2O,0.02 g FeSO4·7H2O,用0.10 mol/L HCl溶液溶解定容至0.10 L),用去离子水定容至1.00 L,自然pH。高压蒸汽灭菌后,加入一定量烟碱(用0.22 μm滤膜过滤)。烟碱分离培养基:烟碱培养基中加入1.8%的琼脂。种子培养基:10.00 g胰蛋白胨,5.00 g酵母浸粉,10.00 g NaCl,先溶于0.90 L去离子水,用5.00 mol/L的NaOH溶液调pH至7.00,再用去离子水定容至1.00 L。培养基121 ℃高压蒸汽灭菌20 min。

1.1.3 主要试剂和仪器 烟碱(纯度≥98%) 购自洛阳天科生物工程有限公司;UV-6100PC紫外可见分光光度计(上海美谱达仪器有限公司);UltiMate3000高效液相色谱仪(美国戴安公司);HZ-9211K空气恒温振荡器(太仓市华利达实验设备有限公司);CR22G高速冷冻离心机(日本日立公司)。

1.2 烟碱降解菌的分离

称取2.00 g土壤样品于20.00 mL烟碱培养基,30 ℃、180 r/min摇床培养。用0.90%生理盐水梯度稀释,涂布于烟碱分离培养基,于30 ℃培养,挑取菌株划线分离纯化。分别将纯化的菌株接入烟碱培养基中,于30 ℃、180 r/min摇床培养,测定发酵液中烟碱质量浓度。

1.3 烟碱培养基中烟碱质量浓度的测定

将菌株接入烟碱培养基中,于30 ℃、180 r/min摇床培养,用不接菌的烟碱培养基作空白对照(CK)。发酵液在12 000 r/min条件下离心5 min,上清液用0.05 mol/L HCl溶液稀释到合适的吸光值范围。以0.05 mol/L HCl 溶液作参比,测定发酵液在紫外光波长为259 nm处的吸光值。烟碱降解率的计算公式为:

烟碱降解率=(原培养液中烟碱质量浓度-发酵液中烟碱质量浓度)/原培养液中烟碱质量浓度×100%

1.4 菌体生长量的测定

将菌株接种至烟碱培养基中,在30 ℃、180 r/min条件下摇床培养,定时取样,采用分光光度法测定菌体的生长量和烟碱降解率,菌体生长量用D600 nm表示。

1.5 静止细胞的制备

将菌株接种于种子培养基中,在生长对数期转接到含有烟碱质量浓度为1.00 g/L的烟碱培养基中,生长对数期离心菌体并用pH 7.00的0.05 mol/L K2HPO4/KH2PO4缓冲液洗3次备用[12]。

1.6 发酵液的HPLC检测

用0.22 μm的水相膜过滤发酵液,HPLC检测,检测条件为:波长为259 nm,色谱柱为C18柱(4.6 mm×250 mm,5 μm),流动相为甲醇(色谱纯)∶1 mmol/L H2SO4=25∶75(V/V),流速为0.50 mL/min,柱温为30 ℃,进样量为20.00 μL。

2 结果与分析

2.1 烟碱降解菌的分离与烟碱的测定

用0.05 mol/L的HCl溶液将纯烟碱配制成浓度为5.00 g/L的工作液,分别取工作液0.01、0.02、0.03、0.04、0.05和0.06 mL,用0.05 mol/L HCl溶液定容至10.00 mL,以0.05 mol/L HCl溶液为参比,测定不同浓度烟碱溶液在259 nm处的吸光值。结果显示,烟碱浓度在0.005~0.030 g/L范围内时,吸光值(y)与烟碱浓度(x)呈正相关,线性回归方程为y=35.014 29 x+0.000 07,r=0.999 95。

将烟碱降解菌SCUEC2菌株以5%的接种量接种至烟碱培养基,烟碱质量浓度为1.00 g/L,30 ℃、180 r/min摇床培养10 h,进行降解烟碱能力的测定,结果(图1)显示,未接种的烟碱培养基(CK)在259 nm处有吸收峰,而经SCUEC2菌株培养10 h后,259 nm处吸收峰降低,表明SCUEC2菌株具有烟碱降解能力。

2.2 烟碱降解菌SCUEC2菌株的烟碱降解率与生长量的关系

将烟碱降解菌SCUEC2菌株以5%的接种量接种至烟碱培养基中,烟碱质量浓度为1.00 g/L,30 ℃、180 r/min摇床培养,取样测定并计算发酵液的烟碱质量浓度和菌体浓度。结果(图2)显示,随着SCUEC2菌株的生长,烟碱不断被降解,10 h后 SCUEC2菌株生长量达到最大,此时降解率达88.80%,表明烟碱降解率和菌体生长量呈正相关。

2.3 烟碱降解菌SCUEC2菌株对烟碱的耐受性

将烟碱降解菌SCUEC2菌株以5%的接种量接种至烟碱培养基中,烟碱质量浓度分别为5.00、6.00和7.00 g/L,在30 ℃下、180 r/min摇床培养48 h,取样测定并计算发酵液的烟碱降解率和菌体浓度。结果(表1)显示,烟碱质量浓度为5.00 g/L时,烟碱降解率为80.84%;烟碱质量浓度为6.00 g/L时,烟碱降解率为82.59%;烟碱质量浓度7.00 g/L时菌株生长被抑制,烟碱降解率呈下降趋势,烟碱降解率为18.94%。

2.4 温度对烟碱降解菌SCUEC2菌株烟碱降解率和菌体生长量的影响

将烟碱降解菌SCUEC2菌株以5%的接种量接种至烟碱培养基中,烟碱质量浓度为1.00 g/L,分别在20、25、30、37和42 ℃下,180 r/min摇床培养12 h,取样测定并计算发酵液的烟碱降解率和菌体浓度,结果(表2)显示,温度为30 ℃时,烟碱降解率和菌体生长量最大;当温度低于30 ℃时,烟碱降解率和菌体生长量随温度的升高而增大,但影响较小;当温度大于37 ℃时,菌株的生长受到抑制,烟碱降解率和菌体生长量随温度的升高呈快速下降的趋势。

2.5 烟碱降解菌SCUEC2菌株中间代谢产物HPLC分析

将烟碱降解菌SCUEC2菌株的静止细胞(D600 nm为0.60左右)以10%的接种量接种至pH 7.00、烟碱质量浓度为1.00 g/L的0.05 mol/L K2HPO4/KH2PO4缓冲液中,30 ℃、180 r/min摇床培养48 h,定时取样,发酵液12 000 r/min离心5 min,用0.22 μm的水相膜过滤,进行HPLC检测。结果(图3)显示,液体培养基中烟碱的保留时间在5.25 min左右。当培养到16 h时,5.25 min左右的烟碱峰面积明显减少,出现一个保留时间在11.79 min左右的新色谱峰,表明培养基中的烟碱被降解,同时产生中间代谢产物。

3 小结与讨论

本研究从湖北省襄阳市烟草种植地土壤中分离得到1株烟碱降解菌,为蒙氏假单胞菌(Pseudomonas monteilii)。在30 ℃下,180 r/min摇床培养,当接种量为5%,烟碱质量浓度为1.00 g/L时,发酵10 h后烟碱降解率达到88.80%。在30 ℃下,180 r/min摇床培养48 h,当接种量为5%,烟碱质量浓度为6.00 g/L时,烟碱降解率为82.59%;烟碱质量浓度为7.00 g/L时,烟碱降解率和菌株生长呈下降趋势,烟碱降解率为18.94%。烟碱降解菌SCUEC2菌株最适生长温度为30 ℃并对高温较敏感,当温度高于37 ℃时,菌株生长受到一定的抑制。

烟碱的毒性很高,目前国内外报道的降解烟碱微生物主要有烟草节杆菌、嗜烟碱节杆菌、氧化节杆菌、纤维单胞菌属、棒杆菌属、阴沟肠杆菌、烟草微球菌、假单胞杆菌、恶臭假单胞杆菌、中间苍白杆菌属等。本研究从湖北省襄阳市烟草种植地中分离得到烟碱降解菌SCUEC2菌株,该菌株具有高烟碱耐受力和高烟碱降解力,为利用生物技术降解烟碱废弃物和降低烟叶中烟碱含量奠定了基础。

教育期刊网 http://www.jyqkw.com
参考文献:

[1] YUAN Y J, LU Z X, HUANG L J, et al. Optimization of a medium for enhancing nicotine biodegradation by Ochrobactrum intermedium DN2 [J]. Journal of Applied Microbiology, 2006, 101(3):691-697.

[2] RAMAN G, MOHAN K, MANOHAR V, et al. Biodegradation of nicotine by a novel nicotine-degrading bacterium,Pseudomonas plecoglossicida TND35 and its new biotransformation intermediates[J]. Biodegradation, 2014,25(1):95-107.

[3] RUAN A D, MIN H, PENG X H, et al. Isolation and characterization of Pseudomonas sp. strain HF-1, capable of degrading nicotine[J]. Research in Microbiology, 2005, 156(5-6):700-706.

[4] LIU Y H, WANG L J, HUANG K M, et al. Physiological and biochemical characterization of a novel nicotine-degrading bacterium Pseudomonas geniculata N1[J]. PloS One,2014,9(1): e84399.

[5] BAITSCH D, SANDU C, BRANDSCH R, et al. Gene cluster on pAO1 of Arthrobacter nicotinovorans involved in degradation of the plant alkaloid nicotine: Cloning, purification, and characterization of 2,6-dihydroxypyridine 3-hydroxylase[J]. Journal of Bacteriology,2001,183(18):5262-5267.

[6] IGLOI G L, BRANDSCH R. Sequence of the 165-kilobase catabolic plasmid pAO1 from Arthrobacter nicotinovorans and identification of a pAO1-dependent nicotine uptake system[J]. Journal of Bacteriology,2003,185(6):1976-1986.

[7] MIHASAN M, BRANDSCH R. pAO1 of Arthrobacter nicotinovorans and the spread of catabolic traits by horizontal gene transfer in gram-positive soil bacteria[J]. Journal of Molecular Evolution, 2013,77(1-2):22-30.

[8] 孔 雯,先 锋,李长影,等.1株烟碱降解菌的筛选、鉴定及其降解性能的初步研究[J].华中农业大学学报,2011,30(1):30-33.

[9] TANG H Z, WANG L J, MENG X Z, et al. Novel nicotine oxidoreductase-encoding gene involved in nicotine degradation by Pseudomonas putida strain S16[J]. Applied and Environmental Microbiology, 2009, 75(3): 772-778.

[10] TANG H Z, WANG S N, MA L Y, et al. A novel gene, encoding 6-hydroxy-3-succinoylpyridine hydroxylase,involved in nicotine degradation by Pseudomonas putida strain S16[J]. Applied and Environmental Microbiology,2008,74(5):1567-1574.

[11] WANG L J, TANG H Z, YU H, et al. An unusual repressor controls the expression of a crucial nicotine-degrading gene cluster in Pseudomonas putida S16[J]. Molecular Microbiology, 2014, 91(6): 1252-1269.

[12] WANG S N,LIU Z, TANG H Z, et al. Characterization of environmentally friendly nicotine degradation by Pseudomonas putida biotype A strain S16[J]. Microbiology,2007,153(5):1556-1565.

[13] 翟贵发,陈素卉,李 涵,等.烟碱降解菌CW6菌株的分离鉴定及其降解特性[J].华中师范大学学报(自然科学版),2013, 47(5):676-680.

[14] 李晓华,杨晓潼,翟贵发,等.烟碱降解菌DAB2菌株的筛选、鉴定和降解特性[J].中南民族大学学报(自然科学版),2013, 32(3):18-21.

[15] WANG S N, HUANG H Y, XIE K B, et al. Identification of nicotine biotransformation intermediates by Agrobacterium tumefaciens strain S33 suggests a novel nicotine degradation pathway[J]. Applied Microbiology and Biotechnology,2012, 95(6): 1567-1578.

[16] WANG S N, LIU Z, XU P. Biodegradation of nicotine by a newly isolated Agrobacterium sp. strain S33[J]. Journal of Applied Microbiology,2009,107(3):838-847.

[17] 孔 雯.烟碱降解菌的分离鉴定、降解特性及其降解途径的初步研究[D].武汉:中南民族大学,2011.

[18] GONG X W, YANG J K, DUAN Y Q, et al. Isolation and characterization of Rhodococcus sp. Y22 and its potential application to tobacco processing[J]. Research in Microbiology, 2009,160(3):200-204.

[19] MENG X J, LU L L, GU G F, et al. A novel pathway for nicotine degradation by Aspergillus oryzae 112822 isolated from tobacco leaves[J]. Research in Microbiology, 2010, 161(7): 626-633.